本方案仅提供一个指导，请根据您的具体需要进行修改。
1、制备染色液
（1）染料储存液:取低温保存的冻干粉置于室温回温至少20min，低速离心后，加入甲醇或无水DMSO充分溶解配制成10-100μM储存液。配置好的储存液分装后于-20或-80℃避光保存；
（2）染料工作液:建议使用PBS (本方案使用的PBS均为pH7.4的1xPBS)稀释储存液，配制浓度为10-200nM的工作液。
注意:
① 请根据实际情况调整及优化工作液浓度，现用现配。
② 可使用含1% BSA的PBS稀释储存液，能够降低非特异背景染色，也能最小化鬼笔环肽粘附到管壁的可能性。
2、细胞染色
（1）细胞爬片培养，生长达到70-80%的汇合度。
（2）吸弃培养液，用37°C预热的PBS清洗细胞2次。
（3）使用溶于PBS的4%多聚甲醛固定细胞，室温固定10min。
注意:
① 固定过程中甲醇能破坏肌动蛋白，建议使用无甲醇的固定液；
② 也可以在含3-4%福尔马林的PBS中室温固定细胞10-30分钟。
（4）室温下使用PBS清洗细胞2-3次，30s/次。
可选步骤①：用含10 mM乙醇胺（或0.1 M甘氨酸）的PBS处理细胞5分钟，用于淬灭过量的福尔马林；
可选步骤②：将含0.1% Triton X-100的PBS添加到固定细胞中，静置3-5分钟，以增加渗透性，然后用PBS洗涤细胞2-3次。
（5）取约100μl现配的染色工作液，使其完全覆盖盖玻片上的细胞，室温避光孵育30min。
注意:
①通常情况下4℃-37℃均适合用于染色。为了避免工作液的挥发，孵育过程中将盖玻片置于一密封的容器内；
②若有需要，此时可加入不同于TFAX 488荧光光谱的细胞核染色液。
（6）室温下使用PBS清洗细胞2-3次，30s/次。
（7）使用滤纸尽量吸干细胞表面液体，将盖玻片倒置在滴有一滴抗荧光淬灭剂的载玻片上，用纸巾轻轻吸掉多余淬灭剂，然后用透明指甲油密封盖玻片四周。将此法处理玻片置于4℃避光存放至少6个月仍能维持F-actin染色。
（8）荧光显微镜下观察染色结果，Phalloidin-TFAX 488的最大激发光/发射光为490/520nm。
注意事项：
① 可在细胞培养板/共聚皿中对细胞进行染色，步骤（7）改为滴加抗荧光淬灭剂到孔内保护荧光；
② 鬼笔环肽染色不适用于甲醇或丙酮固定的细胞，这类固定剂会破坏肌动蛋白的结构，并阻止鬼笔环肽进行染色，推荐使用0.2%戊二醛固定细胞；
③ 鬼笔环肽对pH值敏感：如果pH值升高，鬼笔环肽中关键的硫醚桥键会被裂解，从而失去对肌动蛋白的亲和力；
④ 鬼笔环肽染色可以与抗体染色搭配使用，推荐在一抗或二抗孵育期间加入鬼笔环肽偶联物；
⑤ 鬼笔环肽偶联物的最佳浓度和孵育时间取决于具体的细胞类型、固定/样本制备条件和/或细胞/组织对探针的通透性；
⑥ 悬浮细胞可以附着在多聚-D-赖氨酸微孔板或盖玻片上，然后使用贴壁细胞方案进行染色；
⑦ 如果细胞状态差，建议在染色液和洗涤液中加入血清（2-10%）；
⑧ 在某些情况下，可以使用一步法快速进行鬼笔环肽染色：4℃下，在3.7% 福尔马林和50-100 µg/mL棕榈酰溶血磷脂酰胆碱与鬼笔环肽偶联物中孵育 20分钟，然后洗涤3次并封固；
⑨ 在未固定的样本中进行染色时，鬼笔环肽的结合会降低肌动蛋白亚基与肌动蛋白丝末端的解离速率，从而通过防止肌动蛋白丝解聚来稳定肌动蛋白丝；
⑩ 对于其他样本类型的染色流程，为优化固定条件，便于染色，建议在一定范围内变更固定时间和福尔马林浓度；
⑪ 鬼笔环肽可用于经福尔马林固定和透化的组织切片、细胞培养物等样本类型以及无细胞实验，也可用于已脱蜡的石蜡包埋样本，且鬼笔环肽染色不需要抗原修复；
⑫ 鬼笔环肽的半数致死量LD50为2 mg/kg，使用时请注意防护。但通常情况下，鬼笔环肽的用量很小，不会造成重大安全风险；
⑬ 荧光染料均存在淬灭问题，请尽量注意避光，以减缓荧光淬灭；
为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
